Ивановская государственная медицинская академия , Ивановский государственный химико-технологический университет
ООО Научно-производственная фирма «Недра»
Эта работа опубликована в сборнике научных трудов «Проблемы и перспективы современной науки» (2009 год, Том 2, выпуск 1), под редакцией проф., д.б.н. Ильинских Н.Н.
Посмотреть титульный лист сборника
Скачать сборник целиком (15 мб)
Данное исследование выполнено в рамках гранта РФФИ № 06-04-08048 «Теоретическое и экспериментальное обоснование бактерицидности препаратов на основе гумусовых кислот торфа». Препараты под общим названием ТОМЕД разработаны в Ивановском государственном химико-технологическом университете.
Ранее нами было доказано стимулирующее действие жидкофазных препаратов торфа на заживление кожных ожоговых ран у крыс и зависимость формирования регенерата от сроков их аппликации и концентрации активного начала – гумусовых кислот. Целью настоящей работы является сравнительное изучение процессов регенерации при использовании различных лекарственных форм этих препаратов (раствор, паста и гель).
Материалы и методы
Эксперимент выполнялся на 20 животных – белых беспородных крысах самцах массой 200-250 г. Ожог диаметром 1 см наносился под эфирным наркозом в струе проходящего пара, на боковой поверхности туловища, с экспозицией 5 секунд. После этого ожоговую рану помещали в капсулу из прозрачного полимерного материала.
Далее животные были разделены на одну контрольную и четыре опытных группы, по 4 особи в каждой. У крыс контрольной группы капсула оставалась пустой, и заживление раны происходило на воздухе, под струпом. Крысам первой опытной группы в капсулу вводили 1% раствор гумусовых кислот объемом 1 мл, второй – пасту с высоким содержанием гумусовых кислот, третьей и четвертой – 1% гидрогель. Смена ее содержимого производилась один раз в сутки. Раны подвергались воздействию препаратов в течение 5 суток у животных контрольной и первых трех опытных групп, 7 суток – в четвертой опытной группе. Далее капсулы снимали у всех животных и отмечали время полной эпителизации дефекта. На 21-е сутки после нанесения ожога в утренние часы проводили эвтаназию. После забора материала готовили срезы и анализировали их при помощи световой микроскопии по следующим параметрам: площадь и толщина эпидермиса над дефектом; количество слоев клеток эпидермиса над дефектом; площадь регенерата и его толщина, измеренная в центральной части среза. Морфометрические исследования проводили на анализаторе изображений с помощью программы «ВидеоТест-Мастер». Достоверность различия средних оценивали по t-критерию Стьюдента.
Результаты и их обсуждение
Во всех опытных группах эпителизация ожоговой раны происходила быстрее, чем в контроле. Лучший по срокам результат был достигнут в первой и второй опытных группах (см. таблицу), причем разница с контрольной группой статистически достоверна (p < 0,05).
При морфологическом исследовании срезов из центральной части дефекта как в контрольной, так и в опытных группах выявляется полностью эпителизированный регенерат на стадии начала замещения грануляционной ткани фиброзной.
У животных всех групп эпидермис в зоне повреждения более или менее гипертрофирован. Наивысшая степень гипертрофии наблюдается у животных контрольной группы: максимальная толщина эпидермиса в этой группе статистически достоверно (p < 0,05) больше, чем во второй, третьей и четвертой опытных (см. таблицу). Эпидермис в опытных группах образует многочисленные впячивания, формируя микрорельеф кожи.
Максимальную площадь эпидермиса над дефектом также имеют животные контрольной группы, причем отличия от всех опытных групп (см. таблицу) статистически достоверны (p < 0,05). Это связано как с большей толщиной эпидермиса, так и с большей его протяженностью над дефектом в контрольной группе ввиду большей площади самого регенерата.
В подлежащей дерме у всех животных наблюдается замещение грануляций фиброзной тканью. У животных контрольной группы формируется неполноценный регенерат рубцового типа. В первой, третьей и четвертой опытных группах формируются более полноценные регенераты по сравнению с контролем. Фиброзная ткань располагается поверхностно, занимая приблизительно 1/3 толщины дермы. Между коллагеновыми волокнами имеются большие промежутки. В регенератах выявляются волосяные фолликулы, сохранившие жизнеспособность под действием препарата торфа.
У животных второй опытной группы регенерат значительно отличается от других опытных групп. Наблюдается формирование глубокого и сравнительно узкого дефекта, затрагивающего внутрикожную мышцу. В нижних слоях располагается скопление лимфоцитов и макрофагов. Выявляются мощные грануляции с большим количеством сосудов, коллагеновые волокна располагаются плотно. Волосяные фолликулы отсутствуют.
Площадь регенерата на срезе в контрольной группе максимальна и статистически достоверно (p < 0,05) превышает значения аналогичного показателя в первой, третьей и четвертой опытных группах (см. таблицу), статистически достоверные различия со второй опытной группой отсутствуют. В опытных группах меньше и толщина образованного регенерата (см. таблицу). Подобные результаты свидетельствуют о сохранении жизнеспособности тканей, прилежащих к первичному ожоговому повреждению, и уменьшении степени вторичной альтерации под влиянием использованных препаратов торфа. Вместе с тем во второй опытной группе толщина регенерата практически не отличается от контрольных значений.
Таким образом, в нашем исследовании выявлено, что аппликация на ожоговую поверхность всех использованных препаратов торфа стимулирует процессы эпителизации. Однако процессы, протекающие в регенерате под влиянием различных лекарственных форм, по-видимому, имеют существенные различия. Большая часть результатов морфологического анализа и морфометрических данных свидетельствует о том, что растворы и гидрогели с небольшой концентрацией активного начала (гумусовых кислот) оказывают тканесохраняющий эффект и способствуют формированию более полноценного регенерата по сравнению с сухим заживлением. Паста не оказывает такого действия, что может быть связано с высокой концентрацией в ней активных веществ, которые производят дополнительное повреждение тканей, углубляя некроз.
Таблица
Данные морфометрии
Группа
Параметр
|
Контроль
|
Опыт
|
I
|
II
|
III
|
IV
|
Сроки эпи-телизации, сут.
|
18,0 ± 2,1
|
14,5 ± 1,7
|
14,3 ± 1,7
|
16,0 ± 2,1
|
16,8 ± 1,7
|
Площадь
эпидермиса,
мм2
|
0,32 ± 0,04
|
0,23 ± 0,05
|
0,13 ± 0,02
|
0,22 ± 0,01
|
0,21 ± 0,04
|
Максимальная толщина эпидер-миса,
мкм
|
117, 44 ± 19,25
|
97,56 ±
15,56
|
67,90 ±
13,30
|
83,21 ±
17,9
|
84,92 ±
10,56
|
Количество слоев эпидермиса
|
3 – 14
|
2 – 12
|
3 – 9
|
3 –10
|
3 – 10
|
Площадь регенерата,
мм2
|
2,25±0,41
|
1,49 ± 0,37
|
1,60 ± 0,83
|
1,54 ± 0,45
|
1,44 ± 0,27
|
Толщина регенерата,
мм
|
1,12 ± 0,25
|
0,85 ± 0,28
|
1,07 ± 0,51
|
0,92 ± 0,05
|
0,61 ± 0,13
|
|