Торф представляет собой болотное отложение и образуется в процессе естественного отмирания и неполного распада болотных растений в условиях избыточного увлажнения и затруднённого доступа воздуха. Традиционно торф использовался как твердое топливо и удобрение в сельском хозяйстве, однако, кроме того компоненты торфа являются ценным источником для создания медицинских препаратов. Есть сведения об эффективном использовании препаратов на основе экстрактов торфа при лечении различных заболеваний, таких как хронический сальпингоофорит, ревматический артрит, остеоартроз, антибактериальным и гепатопротекторным действиям. Фармакологические свойства торфа обусловлены содержанием гуминовых веществ и богатым набором биологически активных соединений, благоприятно воздействующих на организм человека [1].
Таким образом, целью нашей работы является выделение биологически активных гуминовых комплексов торфов и сравнение их фармакологической активности в зависимости от метода выделения и способа сушки, а также комплексный фотохимический анализ полученных объектов.
В качестве объектов исследования были использованы низинный торф месторождения Орловское, Томской области.
Получение гуминового комплекса проводили двумя методами: путем экстрагирования сырья 0,1м гидроксидом натрия и методом ультразвуковой экстракции. Сушку проводили также двумя методами: инфракрасным светом и конвективным методом (при температуре 28 - 30).
Естественно, для того, чтобы судить о фармакологической активности полученного экстракта необходимо сначала определить качественный состав биологически активных веществ. Фармакопейными методами был определен качественный состав 8 групп БАВ, обнаружены такие группы соединений как флавоноиды, кумарины, фенолкарбоновые кислоты, полисахариды гуминовые кислоты. Не найдены дубильные вещества, антраценпроизводные и сапонины.
После чего проводили сравнительный фармакологический анализ полученных комплексов. В качестве фармакологического теста служила методика определения антигрибковой активности С.А. Вичкановой на питательной среде Сабуро, методом последовательных серийных разведений. В качестве тестовых микроорганизмов использовали штаммы Trichophiton rubrum - 248/700, Trichophiton mentagrophytes var integrita1e ВКПГ - 268, Microsporium canis и Aspergi11us niger, полученные в отделе микологии центрального кожно-венерологического института Министерства здравоохранения России (г.
Москва) и во Всероссийском центре по глубоким микозам и микогенным аллергиям (Санкт-Петербург). Результаты анализа представлены в таблице 1.