Посмотреть титульный лист сборника

Скачать сборник целиком (8,5 мб)

Особенности формирования полиплоидных клеток в настоящее время подробно изучены [3; 4] и отмечено значительное влияние условий инкубации культур на процессы функционирования клеток [1]. В то же время в литературе практически не встречается информация о роли условий инкубации фибробластов на изменение особенностей поведения полиплоидных клеток соединительной ткани, принимающих участие в различных процессах. Получение таких данных представляется важным, поскольку заболевания соединительной ткани имеют широкое распространение [2].
Целью исследования являлось определение влияния условий инкубации культур фибробластов на активность формирования и морфо-функциональные характеристики полиплоидных клеток. Концентрация посадки составляла 100 тыс. фибробластов линии L929 в 1 мл взвеси. Формировали следующие экспериментальные группы культур: со сниженной в два раза концентрацией посадки клеток; с внесением по 20 мкг/мл липополисахарида; с внесением по 0,3 мл взвеси перитонеальных клеток (выделенных от мышей линии BALB/c) или с добавлением (в указанном объеме) взвеси активированных липополисахаридом перитонеальных клеток (полученных от животных этой же линии). Контролем служили интактные клеточные культуры. Оценку результатов проводили через 48 часов от начала инкубации. Определяли относительное содержание полиплоидных фибробластов и количество активно секретирующих полиплоидных клеток.
Изменение концентрации посадки клеток не влияло на суммарную частоту встречаемости полиплоидных фибробластов. Однако в группе культур с низкой концентрацией посадки фибробластов отмечали, что секретирующих полиплоидных клеток было в 2,5 раза больше, чем в группе культур со стандартной концентрацией. Активизация секреторной функции, возможно, являлась следствием включения компенсаторных механизмов в ответ на неблагоприятные условия инкубации (снижение концентрации клеток в культуре, вызывающее недостаток регуляторных факторов).
Добавление в культуры фибробластов липополисахарида приводило к незначительному возрастанию количества секретирующих полиплоидных клеток. Наблюдали увеличение численности полиплоидных клеток по сравнению с контролем при совместной инкубации культур фибробластов с перитонеальными клетками и с перитонеальными клетками, активированными липополисахаридом в 1,6 и в 2,1 раза, соответственно. Вероятной причиной данного явления следует считать опосредованное влияние цитокинов (синтезируемых иммунокомпетентными клетками) на ряд процессов предшествующих формированию полиплоидных фибробластов.
Таким образом, в результате влияния условий инкубации культур наблюдали изменение частоты встречаемости и секреторной активности полиплоидных фибробластов. Эту информацию целесообразно использовать при изучении процессов функционирования данных клеток.

Список литературы:
1. Ильин Д.А., Архипов С.А Сравнительная оценка функциональной и интегративной активности макрофагов и лаброцитов в генотипически различных культурах перитонеальных клеток // VII всероссийская конференция по патологии клетки. Москва, 2005. - С. 56 - 57.
2. Adebajo A.O., Alegbeleye J.A. Cross cultural aspects of rehabilitation in rheumatic diseases // Curr. Opin. Rheumatol. - 2007. - V. 19. - № 2. - P. 163-167.
3. Giammona L.M., Fuhrken P.G., Papoutsakis E.T., Miller W.M. Nicotinamide (vitamin B3) increases the polyploidisation and proplatelet formation of cultured primary human megakaryocytes // Br. J. Haematol. - 2006. - V.135. - № 4. - P.554-566.
4. Iancu-Rubin C., Nasrallah C.A., Atweh G.F. Stathmin prevents the transition from a normal to an endomitotic cell cycle during megakaryocytic differentiation // Cell Cycle – 2005, V. 4, #12, P. 1472-1478.