Ставропольская государственная медицинская академия
Эта работа опубликована в сборнике научных трудов «Естествознание и гуманизм» (2007 год, Том 4, выпуск 2), под редакцией проф., д.б.н. Ильинских Н.Н.
Посмотреть титульный лист сборника
Скачать сборник целиком (17 мб)
Учитывая все возрастающие масштабы применения металлсодержащих ксенобиотиков, их высокую токсичность, способность накапливаться в организме человека, оказывать вредное влияние даже в сравнительно низких концентрациях, данные химические загрязнители среды должны быть отнесены к числу важнейших(4)
Среди многочисленных «мишеней» тяжелых металлов свободные радикалы и противостоящие им антиоксидантные системы занимают особое положение, т.к. нарушение баланса между образованием и гашением свободных радикалов обычно приводит к развитию окислительного стресса.
С другой стороны, современные данные свидетельствуют, что основной гормон шишковидной железы мелатонин наряду с прочими свойствами проявляет четкую антиоксидантную активность (1). В связи с этим представляется важным изучить состояние ферментативной и неферментативной антиоксидантной систем крови в условиях введения cмеси солей тяжелых металлов, обнаруженных в почве и питьевой воде г. Ставрополя, и ее коррекцию мелатонином.
Материалы и методы исследования. Опыты выполнены на 40 белых беспородных крысах-самцах массой 110 – 150 г (в марте месяце). Животные были разделены на 4 группы. 1-я группа (контрольная) получала физиологический раствор внутрибрюшинно. Во 2-ю группу вошли животные, которым вводили смесь солей ТМ. Модель хронической интоксикации создавали путем внутрибрюшинного введения изучаемой комбинации металлов в течении 10,30 и 90 дней. Соотношение доз металлов в комбинации приблизительно соответствовало среднему соотношению в атмосферном воздухе и питьевой воде г. Ставрополя. Вводимая доза готовилась из маточного раствора: K2Cr2O7 – 17.85 мг/2мл MnCI2 x 7H2O – 20.4мг /2мл; NiSO4 – 14.7мг/2мл Pb(COOH)2 – 36мг/6мл ; FeSO4 x 7H2O 565.95мг/6мл ; CuSO4 x 5H2O – 51.9мг /2мл ; ZnSO4 x 7H2O 8.85мг/2мл. В 3-ей группе использовали мелатонин в дозе 0,1 мг/кг, внутрибрюшинно в вечернее время суток. Животным 4-й группы ТМ вводили утром, а вечером (18ч) мелатонин.
Состояние ферментативной антиоксидантной системы (АОС) крови изучали по активности: каталазы (КАТ), супероксиддисмутазы (СОД), аланинаминотрасферазы(АЛТ), аспартатаминотрансферазы(АСТ) и состояние неферментативной антиоксидантной системы по содержанию мочевины, общего белка, билирубина, β- липопротеинов, которое оценивалось общепринятыми лабораторными методами. Крыс содержали в условиях вивария при естественном освещении и максимальной стандартизации температурного и пищевого режима со свободным доступом к воде и еде. Полученные результаты подвергали вариационной статистической обработке с использованием критерия Стьюдента.
Результаты исследования.
Введение солей ТМ существенно сказывалось на функциональной активности печени. Выражением этого служило повышение концентрации ферментов АСТ и АЛТ, снижение уровня СОД и КАТ. Под действием солей тяжелых металлов количество -липопротеинов уменьшалось в два раза в сравнении с показателями контрольной группы. Уровень альбуминов крови также оказывался ниже, что приводило к падению содержания общего белка. Изолированное применение мелатонина существенных сдвигов вызывало (таб.1). активацию антиоксидантных ферментов и увеличивало содержание липопротеинов.
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
14,02
0,2
|
5,70
0,51
|
74,3
1,7
|
33,9
0,8
|
0,87
0,05
|
0,199
0,01
|
0,186
0,02
|
335,0
13,3
|
6,54
0,72
|
|
13,40
0,2
|
5,72
0,42
|
74,8
1,5
|
34,0
0,1
|
0,90
0,22
|
0,198
0,02
|
0,146
0,03
|
337,0
12,2
|
6,90
0,2
|
|
13,40
0,4
|
5,74
0,54
|
75,1
0,9
|
34,2
0,2
|
0,79
0,12
|
0,200
0,03
|
0,121
0,02
|
336,0
13,5
|
6,90
0,65
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Примечание: Б - билирубин (мкмоль/л); М - мочевина (моль/л); ОБ - общий
белок (г/л); А - альбумины (г/л);
ЛП - бетта-липопротеины (г/л); АСТ-
аспартатаминотрансфераза (МЕ/л); АЛТ – аланинаминотрансфераза
(МЕ/л); СОД - супероксидтрансфераза
(МЕ/мл); КАТ- каталаза (МЕ/л).
*p<0.05 **-p<0.01,*** p<0.001- статистический сдвиг по отношению к контрольной группе #- ##-p<0,01,###-p<0.001-
по сравнению с данными группы крыс,
получавших только соли ТМ.
Если же соли тяжелых металлов комбинировали с мелатонином, то негативное влияние смеси ксенобиотиков заметно ослабевало, свидетельствуя о существовании антагонистических отношений между веществами.Для фермента АЛТ это проявлялось в снижении его активности в 1,4 раза (0,17±0,02 против 0,244 ± 0,01, p<0,001) в сравнении с группой животных, получивших только смесь солей ТМ уже через 10 дней от начала наблюдений. К концу эксперимента отмечалось двукратное падение активности данного фермента (с 0,37±0,01 до 0,17±0,05, p<0,001). Содержание второго цитолитического фермента АСТ достоверно низким оказывалось лишь на 90- й день (0,18±0,01 против 0,4±0,01, p<0,001).
Уровень активности антиоксидантных ферментов СОД и КАТ, наоборот, заметновозрастал: в первые дни – СОД на 55%, КАТ – на 35%, через месяц – уже на 68% и 48 % соответственно. Через три месяца (90 дней) активность СОД была выше на 74%, а КАТ на 83% от показателей сравниваемой группы животных.
Количество β-липопротеинов достоверно выше становилось через 30 дней (0,71 ± 0,01 против 0,5 ± 0,01 во II группе, p<0,001) и сохранялось до конца эксперимента (0,94 ± 0,08 вместо 0,4 ± 0,001).
Концентрация альбуминов достоверно выше оказалось лишь на 90-й день (25,9 ± 0,35 против 20,1 ± 1,1). Содержание общего билирубина уменьшалось (13,8 ± 0,02 вместо 16,39 ± 1,2) и приближалось к контрольным величинам.
Таким образом, на основании полученных сведений можно говорить о том, что мелатонин сглаживает неблагоприятные биохимические сдвиги, вызванные солями тяжелых металлов, что проявлялось в снижении активности цитолитических ферментов АЛТ и АСТ, усилении выработки антиоксидантных ферментов (СОД и КАТ) и восстановлении значений основных показателей крови (билирубина, общего белка, альбумина и липопротеинов).
Обсуждение результатов. В целом, полученные данные свидетельствуют о благоприятном влиянии мелатонина на дисбаланс показателей антиоксидантной защиты, обусловленный интоксикацией солями тяжелых металлов. Согласно полученным нами данным, умеренная гиперактивность (1,5 раза больше, чем в контрольной группе) индикаторного цитолитического фермента АЛТ может указывать на нарушение структуры мембран. Изменение целостности мембран может способствовать увеличению продукции О2- . В этом случае генерация супероксидных анионов возрастает и возникает угроза токсического поражения организма за счет действия активных форм кислорода (5, 6, 10,).
Внутрибрюшинное введение смеси солей тяжелых металлов сопровождалось снижением активности СОД и КАТ, являющиеся ключевыми антиоксидантными ферментами, что соответствует другим литературным данным. Так, повышению содержания свинца сопутствовали снижение активностью СОД и более высокий уровень ПОЛ (6). В условиях in vitro добавление свинца вызывало ингибирование активности СОД, КАТ и глутатиопероксидазы (ГП) в эритроцитах периферической крови, подчеркивая важную роль окислительного стресса в свинцовой интоксикации (6,10). На развитие окислительного стресса указывает и зарегистрированное нами снижение содержания β- липопротеинов, относящихся к экзогенным антиоксидантам неферментативной природы и синергически взаимодействующих с энзиматическими антиоксидантными механизмами.
Согласно полученным результатам, при сочетанном введении мелатонина негативное влияние ТМ ослабевало. Активность АЛТ снижалось и приближалось к норме, СОД и КАТ восстанавливали свою активность. Следовательно, действие мелатонина оказывается направлено на защиту антиоксидантной активности клеток. Возможно, что это связано с его способностью непосредственно связывать свободные радикалы. В экспериментах in vivo и in vitro было показано, что мелатонин обладает значительно более выраженной активностью, чем такие мощные внутриклеточные антиоксиданты как глютатион и витамины Е и С (11). Такая высокая антиоксидантная эффективность мелатонина не может быть объяснена только способностью мелатонина прерывать процесс липидной пероксидации путем инактивации радикала ROO-. Возможно, что она может включать в себя еще и инактивацию радикала ОН- , являющегося одним из инициаторов процесса ПОЛ (7,9). Помимо высокой антиоксидантной активности ряд авторов указывают на хелатирующие свойства мелатонина, что выражается в его способности образовывать прочные комплексы с такими металлами как Cu, Fe, Zn Pb (9).
Тем самым, резонно полагать, что накапливаясь, тяжелые металлы приводят к изменению активности ферментов, нарушают целостность клеточных мембран, стимулируют перекисное окисление липидов, а мелатонин за счет своих антиоксидантных , хелатирующих свойств способен ослаблять их токсическое действие.
Литература
1. Арушанян Э.Б. «Современные аспекты хронофизиологии и хронофармакологии (итоги 20-летнего научного поиска», Ставрополь, СтГМА, -2004. –С.20 – 23.
2. Королюк М.А., Иванова Л.И., Майорова И.Г., Токарев В.Е., Метод определения активности каталазы. Лабораторное дело, -1988. -№1. –С.16 – 18.
3. Саноцкий И.В., Вопросы гигиенического нормирования при изучении отдаленных последствий воздействия промышленных веществ. М.: Наука, - 1972. –С.78 – 82.
4. Трахтенберг И.М., Колесников В.С., Луковенко В.П., Тяжелые металлы во внешней среде (современные гигиенические и токсикологические аспекты // Минск: «Наука и техника», -1994. –С. 285.
5. El-Missiry M.A., Prophylactic effect of melatonin on lead–induced inhibition of heme biosynthesis and deterioration of antioxidant systems in male rats // J. Biochem. Mol. Toxicol. – 2000 – V.4. – P. 57 – 62
6. Ito Y., Niiya Kurita H., Shima S., Sarai S., Serum lipid peroxide level and blood superoxide dismutase activity in workers with occupational exposure to lead // Int. Arch. Occup. Environ Health – 1985 – V. 56 – p. 119 – 127
7. Pablos M.I., Agapito M.T., Gutierres R., et al. Melatonin stimulates the activity of the detoxifying enzyme glutathione–peroxides in several tissues of chicks // J. Rineal Res. – 1995. – V.9 – p.111 – 115.
8. Рarmar P.,Limson J.,Nyokong T., Daya S., Melatonin protects against copper-mediated free radical damage //J. Pineal Res. – 2002. – V. 4. –p. 237 – 242.
9. Reiter R.S., Melchiorri D., Sewerynek E. et al. A review of the evidense supporting melatonin’s role as an antioxidant // J. Pineal Res. – 1995. – V.8. – p.2 – 11
10. Sugawara E., Nakamura K., Miyake T., Fukumura A., Seki Y., Lipid peroxidation and concentration of glutathione in erythrocytes from workers exposed to lead // Br. J. Ind.. Med., - 1991. – V.8. – p.239 – 242.
11. Susa N., Ueno S., Furukawa Y., Ueda J., Sugiyama M., Potent protective effect of melatonin on chromium (VI)–induced DNA single-strand breaks, cytotoxicity, and lipid peroxidation in primary cultures of rat hepatocytes //Toxicol. Appl. Pharmacol. -1997. – V.2 - p. 377 – 384.
|