Изучению антимутагенеза - феномена снижения частоты спонтанных или индуцированных мутаций с помощью антимутагенов посвящено множество работ, подробно рассмотренных в многочисленных обзорах [1,4,5]. Вместе с тем его механизм, интимные процессы формирования антимутагенного эффекта, мишени действия антимутагенов остаются недостаточно изученными.
В настоящее время изменение эффективности репараций повреждений ДНК рассматривается как один из основных механизмов действия антимутагенов [2].

Ранее проведенными исследованиями, с помощью микроядерного анализа [3] нами был осуществлен скрининг среди известных растений Сибирской флоры на предмет выявления наиболее перспективных в антимутагенном отношении видов; в дальнейшем из сырья наиболее активных видов был составлен сбор, активность которого также была подтверждена с помощью вышеуказанного метода анализа. Однако остались невыясненными механизмы антимутагенного действия суммарного комплекса биологически активных веществ из растений, чему и были посвящены наши дальнейшие испытания.

Активность репарационной системы ДНК исследовали с помощью метода сцинтилляционной радиометрии. Исследование проводили на культуре клеток лимфоцитов, которые культивировали по общепринятой методике (Воут,1968). Использовали ФГА фирмы "Difco" США. В качестве источника УФ-излучения применяли две бактерицидные лампы БУФ-15, расположенные на фиксированном (30 см) расстоянии от объекта. Использовали УФ-излучение (длина волны 254 нм) в дозе 15 Дж/м*2, мощностью 1,6 Дж/с. 0,1 мл крови в каждом случае делили на три равные части, одну часть облучали УФ 10 сек., вторую - 15 сек., третью часть (контроль) облучению не подвергали. Каждую из этих порций крови по капле распределяли на 3 лунки в иммунологический планшет. В каждую лунку добавляли по 0,2 мл питательной среды 199 с 10% сыворотки крупного рогатого скота и содержащей SH-тимидин (10 мкКюри/мл среды). Клетки инкубировали в термостате 2 часа при температуре 37 С°. После 2-х часовой инкубации пробы фильтровали через миллипоровые фильтры с диаметром пор 0,2 ц и промывали дистилированной водой (20 мл на пробу), 5%-м раствором трихлоруксусной кислоты (2 мл на пробу) и 96-м этиловым спиртом (1 мл на пробу). В просушенных фильтрах измеряли радиоактивность кислотонерастворимой фракции в импульсах в секунду на сцинтилляционном счётчике Mark (США). Индекс стимуляции определяли по большому среднему значению числа импульсов в облучённых пробах к таковому в контроле (Засухина Г.Д.,1975). В клетках здоровых доноров индекс стимуляции репаративного синтеза ДНК составлял или превышал 2,0 при частичном ингибировании - колебался от 1,3 до 1,9 при глубоком ингибировании - не превышал 1,2 усл. единиц.

Результаты изучения последствий стимуляции ДНК-репарации УФ-облучением и введением 4-НХО представленные в таблице 1 свидетельствуют о том, что индекс стимуляции различен при введении витамина А и экстракта из сбора лекарственных растений. Если витамин А практически слабо влиял на этот показатель, преимущественно в сторону снижения изучаемого показателя, то при введении экстрактов растений этот показатель был достоверно выше, чем в контроле: 5,7±1,1 при стимуляции УФ-лучами (в контроле 2,9±0,4) и 7,6±1,8 при стимуляции 4-нитрохинолин-1-оксидом - (в контроле 3,2±0,4).

Таким образом, описанные данные позволяют предполагать, что именно способность к активации ДНК-репаративных процессов лежит в основе антимутагенного эффекта экстракта из сбора лекарственных растений.