ГБОУ ВПО Пермская государственная медицинская академия им. ак. Е.А.
Вагнера Минздравсоцразвития России (Пермь)
Известно,
что фагоцитарная активность лейкоцитов играет важную роль в сохранении
гомеостаза организма, отражает его состояние и опосредуется влиянием различных
цитокинов и плазменных факторов крови. При этом неспецифический, по сути,
фагоцитоз воспринимается не только как показатель активной защиты организма от
инфекций, но и как один из основных механизмов развития иммунитета,
эффективность которого напрямую зависит от стимуляции или угнетения
функционального состояния фагоцитирующих клеток. Ранее разными авторами была
изучена активность фагоцитов крови у людей в первом и втором поколении после
облучения родителей. Отмечено, что в этом случае фагоцитоз практически не
отличается от показателей здоровых людей [1]. Однако в литературе нет данных по
активности фагоцитоза после иммунизации потомства, родившегося от облучённых
различными дозами ионизирующей радиации родителей.
Цель работы – сравнительное изучение
показателей фагоцитарной активности клеток периферической крови в ответ на
антигенное воздействие у мышей первого поколения от родителей, облучённых
различными дозами ионизирующей радиации.
Материалы и
методы. Эксперимент провели на потомстве
белых беспородных мышей, родителей которых однократно облучили в трёхмесячном
возрасте. Использована доза 0,3 Гр (промежуточная) и доза 3 Гр (большая). Для
спаривания родителей было подобрано шесть вариантов. В контроле спаривали
необлучённых животных. При облучении самцов в дозе 3 Гр потомства получить не
удалось, несмотря на неоднократное повторение опыта.
Все
животные, родившиеся от интактных и от облучённых родителей из двух вариантов
опыта, были разделены на 4 группы: 1-я – мыши, родившиеся от облучённых самок в
дозе 3 Гр и необлучённых самцов (42 животных); 2-я – мыши, родившиеся от облучённых
родителей в дозе 0,3 Гр (25 животных); 3-я – необлучённые мыши (контроль – 37
животных); 4-я – интактные мыши, родившиеся от необлучённых родителей (10
животных).
В
двухмесячном возрасте потомство иммунизировали 5% взвесью эритроцитов барана в
дозе 0,1 мл. В сроки 5, 7, 14, 30 суток оценивали фагоцитарную активность
лейкоцитов периферической крови, используя в качестве объектов фагоцитоза
формалинизированные эритроциты барана (ФЭБ, 100×106 эритроцитов/мл) [2].
К 0,1 мл цельной гепаринизированной крови каждой мыши добавляли 0,1 мл суспензии
отмытых формалинизированных эритроцитов барана. Пробы инкубировали при
температуре 37ºС в течение 20 минут. Содержимое пробирок перемешивали и с
помощью автоматической пипетки наносили 0,015 мл смеси на тщательно
обезжиренное стекло. Готовили мазок, который фиксировали метанолом и окрашивали
по методу Романовскому-Гимза. Подсчитывали под масляной иммерсией (ув. 900) не
менее 100 клеток, потенциально способных к фагоцитозу. Для оценки фагоцитарной
активности применяли традиционные показатели: фагоцитарное число (ФЧ),
фагоцитарный индекс (ФИ), процент фагоцитоза (ПФ), абсолютное количество
фагоцитов (АКФ) [3].
Оценка
АКФ позволяет выявить степень фагоцитарной защиты организма, а также реактивную
активацию нейтрофилов и моноцитов крови, независимо от генетически
детерминированной поглотительной способности этих клеток.
Результаты. Самые высокие показатели
активности фагоцитоза (ПФ, ФЧ, ФИ, АКФ) выявлены у мышей 2-й группы в сроки 5,
7, 14 дней, за исключением 30-х суток, где ФЧ и ФИ несколько ниже, чем в 1-й
группе животных (табл.). Эти же показатели (ФЧ и ФИ) во 2-й группе были
достоверно снижены к 14-м суткам, становясь ещё меньше к 30-м суткам.
Самая низкая функциональная активность
клеток крови, способных к фагоцитозу, была у мышей 1-й группы, родившихся от
облучённых самок дозой 3 Гр. Так на 5-е сутки процент фагоцитов был ниже, чем у
животных 2-й группы, и продолжал снижаться до 30-го дня. Слабой была и поглотительная
способность клеток, хотя на 7-й день ФИ был максимальным с падением в 3,7-2,3
раза к концу сроков исследования. После 7-го дня уменьшалось абсолютное
количество фагоцитов, и к 30-му дню этот показатель был
самым низким.
В контрольной группе поглотительная
способность клеток с 5 по 7-й день выше, чем в 1-й группе в 1,2 раза, хотя АКФ
продолжало нарастать по 14-й день, снижаясь до исходного уровня к 30-му дню,
т.е. оставаясь выше показателей 1-й и 2-й групп (рис.).
Заключение. Таким образом,
иммунизация экспериментальных животных 1, 2, 3-й групп вызывает процесс,
связанный с инактивацией антигена, имеющий различную динамику и
сопровождающийся достоверным изменением показателей фагоцитоза: ПФ, ФЧ, ФИ,
АКФ. Процесс фагоцитоза был более активным и качественным у животных 3-й и 2-й
групп. При этом у животных от облучённых родителей (1-й и 2-й группы) фагоцитарный
процесс характеризовался быстрой истощаемостью и незавершённостью, так как не
достигал исходных показателей, особенно у животных 1-й группы. Это
свидетельствует о том, что активная защита организма от антигена у мышей 1-й
группы снижена по сравнению со 2-й и 3-й группами, как и их противомикробная
резистентность, что очевидно будет отражаться на ослаблении эффективности
иммунных процессов в этой группе. Это подтверждает и серологический метод
исследования, где показатели антителообразования в 1-й группе были самыми низкими
в сроки 5, 7, 14-е сутки.
Литература
1. Аклеев А.В., Косенко М.М. Обобщение
результатов многолетнего изучения иммунитета у населения, подвергшегося
облучению // Иммунология. – 1991. – № 6. – С. 4-7.
2.
Каплин В.Н. Теоретические основы совершенствования диагностики нарушений
иммунологической защиты организма // Материалы научной сессии ГОУ ВПО ПГМА
Минздрава России. – 1997. – С. 66.
3.
Шилов Ю.И., Владыкина В.П., Атнагузина А.Т. Некоторые методические подходы к
оценке показателей общего и дифференцированного фагоцитоза лейкоцитов
периферической крови. Характеристика различий у здоровых людей // Пермский медицинский
журнал. – 1998. – Т. 15. – № 2. – С. 3-6.
Таблица
Динамика
неспецифических показателей фагоцитоза у мышей 1, 2, 3 групп (М±m)
Группы
|
Пока-затели
|
Исходные
данные
|
5 сутки
|
7 сутки
|
14 сутки
|
30 сутки
|
1-я
группа
|
ПФ
|
14,52 ±1,20
|
65,80 ±8,23
|
56,00 ±8,74
|
52,00 ±6,18
|
51,00 ±3,36
|
ФЧ
|
0,16 ±0,01
|
1,88 ±0,30
|
2,03 ±0,09
|
0,13 ±0,31*
|
0,81 ±0,03
|
ФИ
|
1,05 ±0,03
|
2,84 ±0,31
|
3,67 ±0,50
|
0,99 ±0,39*
|
1,60 ±0,06
|
АКФ
|
0,47±0,11
|
0,53 ±0,04
|
0,99 ±0,22
|
0,89 ±0,21
|
0,45 ±0,02
|
2-я
группа
|
ПФ
|
13,42 ±1,10
|
69,00 ±8,40
|
73,67 ±4,98
|
56,40 ±7,04
|
58,80 ±5,44
|
ФЧ
|
0,15 ±0,01
|
2,44 ±0,37
|
2,65 ±0,05
|
1,26 ±0,33*
|
0,76 ±0,03
|
ФИ
|
1,85 ±0,02
|
3,51 ±0,27
|
3,64 ±0,30
|
2,06 ±0,36*
|
1,33 ±0,11
|
АКФ
|
0,41 ±0,10
|
0,75 ±0,19
|
0,91 ±0,35
|
1,01 ±0,23
|
0,53 ±0,11
|
3-я
группа
контроль
|
ПФ
|
15,50 ±1,34
|
65,00 ±5,81
|
61,30 ±7,17
|
47,30 ±3,14
|
39,33 ±1,89
|
ФЧ
|
0,18 ±0,01
|
2,21 ±0,31
|
2,04 ±0,18
|
0,92 ±0,06*
|
0,60 ±0,03
|
ФИ
|
1,15 ±0,04
|
3,36 ±0,35
|
3,37 ±0,23
|
0,96 ±0,10*
|
1,53 ±0,04
|
АКФ
|
0,57 ±0,10
|
0,58 ±0,12
|
0,62 ±0,09
|
0,96 ±0,18
|
0,58 ±0,05
|
Примечание:
* – достоверные различия при p<0,01; сравнение по
срокам в динамике.
Рис.
Динамика АКФ у животных 1, 2, 3-й групп на 5, 7, 14, 30-е сутки
|