Институт ветеринарной медицины Омского государственного аграрного университета

Эта работа опубликована в сборнике научных трудов «Проблемы и перспективы современной науки» (2009 год, Том 2, выпуск 1), под редакцией проф., д.б.н. Ильинских Н.Н.

Посмотреть титульный лист сборника

Скачать сборник целиком (15 мб)

Значительного снижения образования микотоксинов в кормах растительного происхождения можно достичь только начиная профилактические мероприятия с поля: выбирать растения, которые более устойчивы к заражению плесневыми болезнями, запахивать несобранные остатки урожая, использовать правильный севооборот, избегать монокультур. Во время хранения растительных компонентов корма рекомендуют выдерживать следующие параметры микроклимата в хранилище: закладывать на хранение корм с содержанием влаги ниже 12%; относительная влажность воздуха д.б. < 60%; температура в хранилище д.б. <20 °C; зерно чистое, без повреждений; контроль над насекомыми и грызунами. В ряде случаев для сохранения хорошего санитарного качества корма консервируют. Для этой цели используют пропионовую, уксусную, аскорбиновую, бензойную кислоты, генцианвиолет, формальдегид и др. Установлено, что термическая обработка (+180…200°C) в основном не позволяет обеззаразить корма (температура плавления микотоксинов +150…250°C и кратковременное нагревание в сушильных агрегатах их не разрушает, а вот зерно воспламеняется). Специальные кормовые добавки, известные как адсорбенты микотоксинов или связывающие агенты, являются наиболее распространенным подходом для профилактики и лечения микотоксикозов животных. Считается, что эти вещества связывают микотоксины, предотвращая их абсорбцию. Микотоксины и агенты экскретируются с навозом. Связывание микоткосина достигается за счет физической и химической адсорбции Неорганические связывающие микоткосины вещества включают в себя: цеолиты бентониты, обесцвеченные глины, полученные при переработке масла; гидратированные натриево-кальциевые алюмосиликаты и др. К органическим адсорбентам относятся: овсяная шелуха, пшеничные отруби, волокна люцерны, экстракты клеточных стенок дрожжей, целлюлоза, гемицеллюлоза, пектин. Перед началом детоксикации корма необходимо ответить на вопросы: возможно ли усиление токсичности корма после обработки продуктами распада, какова экономическая целесообразность обработки в сравнении с питательной ценностью корма и ценой/качеством полученной продукции.
БАКТЕРИАЛЬНЫЙ СПЕКТР ДАКРИОЦИСТИТА НОВОРОЖДЕННЫХ И ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ ОСНОВНЫХ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ К АНТИБАКТЕРИАЛЬНЫМ ПРЕПАРАТАМ, ИСПОЛЬЗУЕМЫМ ДЛЯ МЕСТНОГО ПРИМЕНЕНИЯ В ОФТАЛЬМОЛОГИИ..
Галеева Г.З*., Самойлов А.Н ., Мусина Л.Т ., Исхакова Л.М.*
Казанского государственного медицинского университета. *- Детская республиканская клиническая больница МЗ РТ

Дакриоцистит новорожденных (ДН) по мнению детских офтальмологов является одним из наиболее распространенных заболеваний слезоотводящих путей у детей раннего возраста.
Данные о заболеваемости в литературе противоречивы. Это заболевание встречается у 1-2% всех новорожденных [4]. По другим данным эта патология составляет 5 -7,3% всех первичных поликлинических больных детского возраста [2].
С начала 90-х годов практически повсеместно на территории России отмечается рост ДН.
В этиологии одним из наиболее важных факторов является микробный [1,2,5,8]. Микробный спектр возбудителей описан в работах зарубежных авторов [6,7,8,9]. В России встречаются единичные работы на эту тему, большая часть которых 30 -40 летней давности [8]. Однако в лечении воспалительных заболеваний нельзя ориентироваться только на данные зарубежных исследователей, поскольку в связи со значительными различиями в политике применения антибиотиков в России и за рубежом распространенность антибиотикорезистентности может значительно различаться [3].
Таким образом изменчивость микробного спектра со временем и в различных географических регионах привело нас к изучению данного вопроса.
Цель. Целью нашего исследования явилось изучение микробного спектра возбудителей ДН и чувствительности основных возбудителей к антибактериальным препаратам, используемым для местного применения в современной офтальмологии.
Материалы и методы. Всего исследовано 95 детей (100 глаз). Исследование проводилось в условиях Детской республиканской клинической больницы МЗ РТ. У детей с ДН бралось содержимое слезного мешка, биоматериал, доставленный в баклабораторию по методике ВОЗ сеяли на питательный агар отечественного производства с добавлением 5% донорской крови и на «шоколадный агар» (для выделения гемофильной палочки) и помещали в СО2 -инкубатор. Идентификация микроорганизмов до вида проводилась по общепринятой методике. Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам осуществлялось соответственно методическим указаниям МУК 4.2.1890-04. Для этого из испытуемой культуры готовили суспензию, оптическая плотность которой составляет 1.5 х 108 КОЕ /мл, что соответствует стандарту мутности 0,5 по МакФарланду. Контроль проводился на денситометре (Becton Dickinson, США). Затем полученную взвесь тампоном инокулировали в агар Мюллер – Хинтон и поверх размещали исследуемые диски с антибиотиками (Bio-Rad, Франция). Чашки с дисками помещали в термостат при температуре 350С на 18-24 часа. Чувствительность к антисептикам определялась по стандартной методике. Подбор антибактериальных препаратов для исследования осуществлялся с учетом наличия антибактериальных препаратов для местного применения в офтальмологии.
Результаты. По результатам бактериологического исследования получен следующий спектр возбудителей ДН: S. epidermidis высеян в 27,0% случаев, S aureus - в 13,0% случаев, S. pneumoniae - в 12,0% случаев, далее процентное соотношение возбудителей распределилось следующим образом: негемолитический streptococcus -7,0%, S. viridans – 6,0%, Enterococcus faecium - 5%гемолитический streptococcus, Kl. Pneumoniae - в 3,0% случаев соответственно, H. Influenzae, Haemophilla spp и Acinetobacter - в 2,0%, S.pyogenes, P. Aeroginozae, Candida albicans, Stenothophomonas maltophilia, – в 1,0% соответственно, в небольшом проценте случаев выделены микробные ассоциации: S. epidermidis + S.viridans, S. epidermidis + S.aureus , Enterococcus faecium + Kl. pneumoniae, H. Influenzae + S. pneumoniae, Candida albicans + негемолитический streptococcus, Гр.+ палочки + E. Coli , S. epidermidis + Psewdomonas spp., S. epidermidis + S. pneumoniae – по 1,0% соответственно, в 9,0% случаев не было роста микрофлоры при посеве на среду.
К пиклоксидина гидрохлориду чувствительны 100% S. epidermidis, S.aureus, S. pneumoniae, негемолитического streptococcus.
К тобрамицину чувствительны 83,3% S.aureus, 33,3% и умеренно чувствительны 33,3% S. epidermidis, 16,7% негемолитического streptococcus, 9,0% S. pneumoniae.
К хлорамфениколу чувствительны 100% S. epidermidis, 83,3%негемолитического streptococcus, 83,3% S.aureus, 81,1% и умеренно чувствительны 9,0% S. pneumoniae.
К тетрациклину чувствительны 100% S. pneumoniae, 83,3 % и умеренно чувствительны 16,6% негемолитического streptococcus, 66,0% и умеренно чувствительны 11,1% S.aureus, 33,3% S. epidermidis.
К эритромицину чувствительны 81,8% и умеренно чувствительны 18,1% S. pneumoniae, 50% и умеренно чувствительны 33,3% негемолитического streptococcus, 66,7% S. epidermidis, 16,6% и умеренно чувствительны 33,3% S.aureus.
К ципрофлоксацину чувствительны 91,6% и умеренно чувствительны 8,3% S.aureus, 66,7% S. epidermidis, 60% S. pneumoniae, 33,3% негемолитического streptococcus.
К сульфацилу натрия чувствительны 72,7% S. pneumoniae, 58,3% S.aureus, 50% негемолитического streptococcus, 33,3% и умеренно чувствительны 67,7% S. epidermidis.
К фурациллину чувствительны 50% S.aureus, 50% негемолитического streptococcus, 42,8% S. pneumoniae. S. epidermidis в 100% устойчив к фурациллину.
Выводы:
1. По данным нашего исследования в условиях ДРКБ наиболее часто встречающийся возбудитель ДН – S. epidermidis, что составляет 27,0% всех обследованных детей, на втором месте идёт S. aureus, который выделен у 13,0% , на третьем месте - S. pneumoniae, который выделен у 12,0%, на четвертом месте Негемолитический streptococcus, выделенный у 7% обследованных детей.
2. S. epidermidis, выделенный от детей с ДН в 100% чувствителен к пиклоксидина гидрохлориду и хлорамфениколу, также отмечается его достаточно высокая чувствительность к ципрофлоксацину и эритромицину - 66.7%,на 100% данный микроорганизм устойчив к фурациллину.
3. S. pneumoniae, выделенный от детей с ДН в 100% чувствителен к пиклоксидина гидрохлориду и тетрациклину, высоко чувствителен также к эритромицину и хлорамфениколу - чувствительность 81,8% соответственно.
4. S.aureus, выделенный от детей с ДН в 100% случаев чувствителен к пиклоксидина гидрохлориду, а также высоко чувствителен к ципрофлоксацину - чувствительность 91,6%, тобрамицину и хлорамфениколу - чувствительность - 83,3% соответственно.
5. Негемолитический streptococcus, выделенный от детей с ДН, чувствителен к пиклоксидина гидрохлориду в 100%, а также отмечается его высокая чувствительность к хлорамфениколу и тетрациклину - 83,3% случаев.

Список литературы:
1. Ашкрофт К.У., Холдер Т.М. Детская хирургия,:пер.с англ. - М.:Медицина.,1993. - Т.2.
2. Боброва Н.Ф., Чумак Н.Н., Верба С.А. Материалы республиканской научно- практической конференции « Актуальные проблемы офтальмологии». -Уфа.1994. - С.27.
3. Страчунский Л.С., Дехнич, А.В., Белькова Ю.А. // Клин.микробиол. и антимикроб. химиотерапия. - 2002. - Том4. - №2.- С 157-163.
4. Черкунов Б.Ф. Болезни слезных органов. – Самара,2001.
5. Becker B.B. //Am.J.Ophthalmol. - 2006. - 142:835-838
6. Brook I., Frazier E.H. //American J. of Ophthalmol. - 1998. - Apr. - P.552-554.
7. Gerkowicz M., Koziol-montewka M, Pietras-trzpiel M. et al. // Klin Oczna. - 2005. - 107(1-3):83. –P.5.
8. Hartikainen J., Lehtonen O.P., Saari K.M. // Br.J. of ophthalmology. - 1997. - 81. - P.37-4
9. Mahajan V. M., Bareja U., Prakash K., Ghose S. // Ann Trop Paediatr. - 1987. - Dec. - 7(4):270-3.