Сибирский государственный медицинский университет, г. Томск

Целью работы явилось исследование действия изменения внутриклеточного рН (рНi) на параметры электрической и сократительной активности гладкомышечных клеток циркулярного слоя проксимального отдела толстого кишечника (ГМК ЦС ПОТК).
Исследование проводилось методом двойного “сахарозного мостика”, позволяющего одновременно регистрировать электрическую и сократительную активность гладкомышечных полосок [1]. Объектом исследования являлись ГМК ЦС ПОТК котов в пределах 1,0 - 1,5 см от Баугиновой заслонки. Изменение рНi проводилось посредством применения общепринятых методических приёмов: хлористого аммония (NH4Cl) (20 мМ) и ацетата натрия (С2Н3OONa) (50 мМ) [3,4].
Хлористый аммоний снижал сопротивление мембраны на 15,75 ± 0,84 % (p  0.05; n = 9), уменьшал амплитуду и количество потенциалов действия на плато катэлектротона и величину вызванных сократительных ответов на 36,4 ± 1,33 % (p  0.05; n = 9) от фоновых значений в нормальном растворе Кребса. Окончание действия NH4Cl характеризовалось частичным увеличением сопротивления мембраны (90 ± 3,95 % (p0.05; n=9)), восстановлением величины потенциалов действия и повышением тонуса мышечных полосок. На этом фоне вызванная сократительная активность возрастала (108,4 ± 4,76 % (p>0.05; n=9)) в сравнении с фоновыми значениями в растворе Кребса.
С2Н3OONa приводил к частичному снижению мембранного потенциала, повышению сопротивления мембраны (105,84 ± 4,78 % (p > 0.05; n = 7)), а вызванная сократительная активность составляла 102,4 ± 4,72 % (p > 0.05; n = 7) от фоновых значений в растворе Кребса. Отмена С2Н3OONa сопровождалась восстановлением мембранного потенциала, дальнейшим увеличение сопротивления мембраны (109,34 ± 5,1% (p > 0.05; n = 7)). При этом наблюдалось повышение величины вызванных сократительных ответов на 9,4 ± 0,05 % (p  0.05; n = 7) в сравнении с контрольными значениями в растворе Кребса.
В растворе Кребса нитропруссид натрия (HNa) (10-4 М) [2] не приводил к развитию начальной гиперполяризации мембранного потенциала, величина сопротивления мембраны снижалась на 53,8 ± 2,49 % (p0.05; n=12). При нанесении деполяризующего импульса на плато катэлектротона регистрировалось не более одного потенциала действия и вызванные сократительные ответы составляли 11,7 ± 0,39 % (p0.05; n = 12) от контрольных значений в нормальном растворе Кребса.
HNa (10-4 М) на фоне действия NH4Cl приводил к снижению величины сопротивления мембраны на 40,36 ± 1,95 % (p0.05; n=6). Вызванная сократительная активность была представлена более длительным периодом фазы расслабления, а величина сокращения составляла 5,6 ± 0,02 % (p0.05; n=6) от значений в нормальном растворе Кребса. При окончании действия NH4Cl HNa (10-4 М) вызывал незначительное повышение мышечного тонуса, частичному восстановлению величины анэлектротонов (81,9 ± 3,63 % (p0.05; n=6)), а вызванная сократительная активность составляла 27,62 ± 1,29 % (p0.05; n=6) от контрольных значений в растворе Кребса.
На фоне тетраэтиламмония (10 мМ) наблюдалось нивелирование ингибирующего влияния внутриклеточного защелачивания и активация электрофизиологических параметров при внутриклеточном закислении.
Таким образом, внутриклеточное закисление, гладкомышечных клеток циркулярного слоя толстого кишечника, сопровождалось повышением электрической и сократительной активности, а при внутриклеточном защелачивании вещества не показали сходного влияния. Нитропруссид натрия усиливал ингибирующее влияние на параметры вызванной электрической и сократительной активности при внутриклеточном защелачивании, в отличие от внутриклеточного закисления, сопровождающегося частичным нивелированием данных параметров. Эти эффекты связаны с калиевой проводимостью мембраны.
Список литературы:
1. Артёменко Д.П. Методика дослежения електрических властивостей нервных там,язовых волокон за доподмогою поверхневих електродив / Д.П. Артёменко, М.Ф. Шуба // Физиол. жур. АН УССР. – 1964. –Т.10, №3. –С. 403 – 407.
2. Геннис Р. Биомембраны: Молекулярная структура и функции: - М.: Мир, 1997. – 624 с.
3. Albert Roos and Walter F. Boron. Intracellular pH. Physiol. Rev. Vol. 61, №2, April 1981.
4. Hisayoshi Hayashi and Yuichi Suzuki. Regulation of intracellular pH during H-coupled oligopeptide absorption in enterocytes from guinea-pig ileum. The Journal of Physiology (1998), 511.2, pp. 573-586.