Сибирский государственный медицинский университет, г. Томск
НИИ фармакологии ТНЦ СО РАМН, г. Томск
Эта работа опубликована в сборнике статей по материалам Международной 65-й научной студенческой конференции им. Н.И. Пирогова (г.Томск, 2006 год) под редакцией проф. Новицкого В.В. и д.м.н. Огородовой Л.М.
Посмотреть титульный лист сборника
Скачать сборник целиком (1,5 мб)
Проблема неуклонно растущей патологии щитовидной железы требует разработки новых патогенетически обоснованных методов лечения тиреоидных заболеваний, направленных на сохранение функции органа. Одним из вариантов коррекции тиреопатий и восстановления функции ЩЖ в условиях ее полного удаления является трансплантация здоровых участков тиреоидной ткани в большой сальник [1,2]. Полученные в последнее время данные о свойствах и закономерностях жизнедеятельности стволовых клеток открыли возможность их применения и в комплексном лечении тиреоидной патологии [2, 3, 4].
Целью исследования явилось изучение динамики восстановления функции ткани щитовидной железы при ее трансплантации в прядь большого сальника с использованием аутологичных адгезирующих кроветворных клеток(ААКК). 150 тиреоидэктомированных животных были разделены на группы: I – с трансплантацией участка ткани ЩЖ; II – с трансплантацией тканевого гомогенизата ЩЖ; III – с трансплантацией участка ткани ЩЖ и введением в трансплантат 500000 ААКК; IV – с трансплантацией тканевого гомогенизата ЩЖ и введением в трансплантат 500000 ААКК. Контрольную группу составили 30 интактных крыс. ААКК готовили по следующей методике. Получали суспензию костномозговых клеток в 1 мл препаровочной среды, содержащей 95 % RPMI-1640 и 5 % ЭТС. После фильтрации через капроновый фильтр и отмывания клеток путем центрифугирования при 1500 об/мин в течение 10 минут, взвесь клеточных элементов в 5 мл препаровочной среды помещали в чашке Петри в СО2-инкубатор с 5 % СО2 при 37°С на 90 мин. Адгезирующие элементы отделяли с помощью 0,25 % раствора трипсина и 0,02 % раствора ЭДТА в соотношении 1:1 в течение 15 минут при тех же условиях. После двукратного отмывания клетки разводили до необходимой концентрации и вводили в трансплантат по 500000 клеток в 0,2 мл препаровочной среды. Функциональное состояния трансплантированной ткани ЩЖ оценивали через 1 и 3 месяца после операции, посредством изучения гормонального (ТТГ, Т4, Т4св., Т3, Т3св) статуса методом иммуноферментного анализа. При оценке функциональной состоятельности трансплантата обращают на себя внимание низкие значения ТТГ во всех группах на этапах наблюдения, причем через 3 месяца значения данного гормона оказались более приближенными к контрольным значениям особенно в III группе(0,047±0,003). В отличии от результатов полученных через месяц после трансплантации, уровень концентрации Т4св к 3-му месяцу оказался почти в 2 раза выше с максимальным значением в III группе(52,76±3,63). Значения Т3св в I и II группе существенно не отличаются друг от друга и от показателей, полученных через 1 месяц после трансплантации. В группах с применением ААКК (III и IV) уровни Т3св на этапах наблюдения существенно разняться, повышаясь к 3-му месяцу наблюдения, хотя и не выходят за пределы контрольных значений. Аналогичная тенденция прослеживается и с показателями концентрации общего Т4. К 3-му месяцу наблюдения максимальное значение общего Т4 зафиксировано во II группе (90,44±34,08 нмоль/л), что превышает данные полученные в контроле. Уровни общего Т3 во всех группах через 1 и 3 месяца наблюдения соответствуют контрольным показателям, с несколько меньшими их значениями на этапе 3-х месячного наблюдения. Оценивая в динамике функциональную состоятельность трансплантированной ткани щитовидной железы и влияние на тиреоидную гормонопродукцию аутологичных адгезирующих кроветворных клеток, можно сделать заключение, что через 3 месяца гормональный фон (Т4, Т4св, Т3св) значимо повышается в группах с применением клеточных технологий. Таким образом, применение аутологичных адгезирующих кроветворных клеток при аутотрансплантации ткани щитовидной железы позволяет снизить проявления тиреоидной недостаточности, обеспечив, при этом, формирование полноценной функциональной активности трансплантата.
Список литературы:
1. Вплив кріоконсервування на імуно-біологічні властивості фрагментів надниркових залоз при алотрансплантації / Г. А. Божок, Н. М. Алабедалькарім, Є. І. Легач // Трансплантологія. – 2004. – т. 5, N 1. – С. 88–92.
2. Попов, О. С., Удут, В. В., Титов, Д. С., Васильченко, Е. Е., Дыгай, А. М., Попова, Н. О., Найденкин, В. И. Способ профилактики послеоперационного гипотиреоза. / Патент на изобретение РФ N2161917 от 20 января 2001 года.
3. The changes of thyroid funsion after transplantasion of marrow in young patients. / Matsumoto, M., Ishiguro, H., Tomita, Y., Inoue, H., Yasuda, Y., Shimizu, T., Shinagawa, T., Hattori, K., Yabe, H., Kubota, C., Yabe, M., Kato, S., Shinohara, O. // Pediatr Int. 2004 Jun; 46 (3) p. 291–5.
4. Impairment thyroid after transplantasion of hemoetic stem precursor-cells in children. / Curtillet, C., Cuadras, P., Dore, E., Chambost, H., Thuret, I., Michel, G. // Arch Pediatr. 2004 Nov; 11 (11) p. 1326–32.
|